Déchiffrage des mécanismes d’assemblage des filaments de septines
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Mots-clés
- cytokinèse
- structures hautement ordonnées
- non-polar filaments
- septine
- septin
- actine
- anillin
- sillon de clivage
- filaments non polaires
- cytokinesis
- higher ordered structures
- actin
- cleavage furrow
Organisme subventionnaire
Résumé
Résumé
Les septines sont des protéines conservées de la levure à l’homme qui sont impliquées
dans divers processus cellulaires tels que la cytokinèse, le transport vésiculaire et l’organisation
du cortex cellulaire. Il existe 13 gènes de septines retrouvés en plusieurs isoformes chez
l’humain, et seulement cinq chez Drosophila melanogaster, Sep1, Sep2, Pnut, Sep4 et Sep5, ce
qui en fait un modèle idéal vu son génome simple. Les septines sont composées d’un domaine
de liaison au GTP très conservé entre les espèces, dont le rôle reste à ce jour ambiguë, ainsi que
de régions N et C-terminales variables. Les septines s’assemblent entre elles pour former un
hexamère, composé de Sep1, Sep2 et Pnut chez Drosophila melanogaster, via l’interface N-C
et G des septines. Ces hexamères s’assemblent bout à bout afin de former les filaments de
septines. Ces filaments peuvent ensuite se regrouper et s’assembler en structures hautement
ordonnées telles que des anneaux, des tubes, des faisceaux de filaments, des cages et elles sont
retrouvées au sillon de clivage durant la cytokinèse. Le but était de déchiffrer les mécanismes
d’assemblage des filaments de septines qui mènent à la formation des différentes structures, afin
de mieux comprendre les mécanismes d’interaction entre les septines. Au sein des cellules S2
de Drosophila melanogaster, les septines sont retrouvées à trois structures hautement ordonnées
et dépendantes de Pnut endogène : des tubes cytoplasmiques, des anneaux cytoplasmiques et le
sillon de clivage durant la cytokinèse. Notre hypothèse est qu’il existe plusieurs mécanismes
qui régissent la formation des structures hautement ordonnées et que ceux-ci sont dépendants
des régions N et C terminales variables des septines qui sont impliquées dans plusieurs
interactions. Divers mutants de Sep1, Sep2 et Pnut tronqués en N et en C-terminal ont été
fusionnés à une protéine fluorescente et caractérisés par microscopie confocale. La localisation
de ces mutants a été répertoriée et analysée en présence des septines endogènes ou lors de la
déplétion de celles-ci. Nos résultats suggèrent que le domaine de liaison au GTP est suffisant
pour le recrutement des septines au sillon de clivage durant la cytokinèse, mais que la région N-terminale
est requise la formation des tubes et des anneaux cytoplasmiques dépendants de Pnut.
Septins are conserved from yeast to humans and are implicated in diverse cellular processes such as cytokinesis, vesicular transport and cellular cortical organization. There are 13 known genes that encode for human septins, which also have many isoforms, while there are only five septin genes in Drosophila melanogaster: Sep1, Sep2, Pnut, Sep4 and Sep5, which makes it an ideal model system. Septins have a conserved GTP binding domain, whose role is still not fully understood, and variable N-C-termini. Septins assemble together, via N-C and G interfaces, to form a hexamer, that is composed of Sep1, Sep2 and Pnut in Drosophila melanogaster, which assemble end-to-end to form non polar filaments. These filaments can subsequently assemble together to form higher-ordered structures, such as rings, tubes, bundles, and gauzes. Furthermore, septins are recruited to the cleavage furrow during cytokinesis although their organization there is unclear. The aim of this project is to define septin assembly mechanisms that can lead to the formation of different higher ordered structures. In Drosophila melanogaster S2 cells, septins are recruited to three, readily observable septin dependent structures: cytoplasmic rings, cytoplasmic tubes, and the cleavage furrow during cytokinesis. Our hypothesis is that multiple mechanisms govern septin incorporation into these structures and that these mechanisms differentially depend on septin N-C variable termini. A panel of mutants of Sep1, Sep2 and Pnut truncated in N-C-termini were fused to fluorescent proteins and their localization in S2 cells monitored by confocal microscopy, with or without depletion of endogenous septins. My results suggest that the GTP binding domain is sufficient for septin recruitment to the cleavage furrow during cytokinesis, but that the septin N-termini are required for recruitment to the cytoplasmic tubes and rings.
Septins are conserved from yeast to humans and are implicated in diverse cellular processes such as cytokinesis, vesicular transport and cellular cortical organization. There are 13 known genes that encode for human septins, which also have many isoforms, while there are only five septin genes in Drosophila melanogaster: Sep1, Sep2, Pnut, Sep4 and Sep5, which makes it an ideal model system. Septins have a conserved GTP binding domain, whose role is still not fully understood, and variable N-C-termini. Septins assemble together, via N-C and G interfaces, to form a hexamer, that is composed of Sep1, Sep2 and Pnut in Drosophila melanogaster, which assemble end-to-end to form non polar filaments. These filaments can subsequently assemble together to form higher-ordered structures, such as rings, tubes, bundles, and gauzes. Furthermore, septins are recruited to the cleavage furrow during cytokinesis although their organization there is unclear. The aim of this project is to define septin assembly mechanisms that can lead to the formation of different higher ordered structures. In Drosophila melanogaster S2 cells, septins are recruited to three, readily observable septin dependent structures: cytoplasmic rings, cytoplasmic tubes, and the cleavage furrow during cytokinesis. Our hypothesis is that multiple mechanisms govern septin incorporation into these structures and that these mechanisms differentially depend on septin N-C variable termini. A panel of mutants of Sep1, Sep2 and Pnut truncated in N-C-termini were fused to fluorescent proteins and their localization in S2 cells monitored by confocal microscopy, with or without depletion of endogenous septins. My results suggest that the GTP binding domain is sufficient for septin recruitment to the cleavage furrow during cytokinesis, but that the septin N-termini are required for recruitment to the cytoplasmic tubes and rings.
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